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載體構(gòu)建實驗常見問題及解決辦法

更新時間:2026-01-19      點擊次數(shù):47

1. PCR

載體構(gòu)建大部分時候都要通過PCR的方法獲取目的片段,擴增PCR的時候大家盡量選用高保真的PCR酶來進行擴增,擴增之前我們首先要了解目的基因序列信息。其次高質(zhì)量的模板對PCR成功與否也很重要,以質(zhì)粒作為模板的PCR相對來說擴增,基因組DNA和cDNA相對來說較難獲取一些。

引物設計工作,一般很多軟件都可以進行引物設計,例如pirmer5之類的軟件。除了常用的酶切連接的方法也可以使用無縫克隆的方法構(gòu)建,選用哪種方法我們都要在引物設計的時候考慮到,酶切連接的方法和無縫克隆引物設計注意點如下:

1) 無縫克隆方法設計引物的時候要加入同源重組臂序列。

2) 做酶切連接引物設計要注意加上保護堿基,保護堿基大部分加入4個堿基可以滿足大多數(shù)內(nèi)切酶,也可以參照限制性內(nèi)切酶保護堿基添加表加保護堿基。

在擴增前我們應了解目的片段是否有高GC、或者重復序列之類的特殊序列,還有片段長度都會影響實驗,不推薦一次構(gòu)建片段5K以上的實驗,如果片段過長我們可以通過拆分目的片段來分步構(gòu)建。

一定要注意要設計好之前的用到的內(nèi)切酶位點的設計,片段長度的增加與實驗難度是成正比的,如果你的目的片段含有高GC序列,可以加入DMSO之類的輔助劑增加PCR的擴增效率,現(xiàn)在市面上針對高GC等特殊結(jié)構(gòu)的PCR酶也很多,大家也可以用此類的酶擴增,擴增好PCR要進行純化回收,此步不多講,一般膠回收試劑盒都能滿足要求。

2. 線性化所用載體

很多人習慣先構(gòu)建到T載體再進行下一步的構(gòu)建,其實基本直接構(gòu)建到最終載體成功率也非常高,以下一些注意事項希望能幫大家節(jié)省時間直接省略T載體構(gòu)建一步成功。

線性化載體的時候,驗證過載體是沒有問題的,通常我們單酶切或雙酶切的時候要注意內(nèi)切酶的buffer是否沒有用錯,一般根據(jù)說明書再延長一些時間會使線性化更加徹di,增加載體構(gòu)建的陽性率,

3. 連接反應

一般載體與目的片段的比例推薦1:1到1:4,使用nanodrop進行定量,通常根據(jù)紫外燈通過亮度對比也是可以的,連接反應的時候在冰上操作,此步要操作輕柔,載體和片段連接酶之類的加入要混勻,PCR上機反應

4. 轉(zhuǎn)化

轉(zhuǎn)化實驗要保證感受態(tài)細胞的轉(zhuǎn)化效率,通常實驗要求轉(zhuǎn)化之后要加入培養(yǎng)基進行復蘇,海創(chuàng)科業(yè)小編大量經(jīng)驗驗證可以不必復蘇,直接涂板,無論是amp抑菌類的抗生素或者kana殺菌類的抗生素都是可以直接涂板的。涂板之后37℃過夜培養(yǎng)即可。

5. 菌落PCR鑒定

做菌落PCR鑒定的時候引物一般選擇載體上的通用引物來鑒定,因為選用目的片段兩端的引物可能會出現(xiàn)假陽性;操作方法一般挑取單克隆在小的EP管培養(yǎng)4小時左右,培養(yǎng)基出現(xiàn)渾濁的情況即可以進行菌落PCR鑒定,鑒定完成后一般送三四個送測序驗證即可,pcr過程可能會發(fā)生突變,所以多送幾個克隆可以保證我們所要的克隆順利獲得。


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